Лазерная сварка с биоприпоем для соединения краев ран на слизистой оболочке полости рта в эксперименте

Цель исследования — в условиях экспериментального моделирования дефектов ротовой полости оценить эффективность соединения краев мягких тканей с применением диодного лазера с длиной волны 970 нм и биоприпоя на основе бычьего сывороточного альбумина и одностенных углеродных нанотрубок.

Материалы и методы. Объектом экспериментального исследования явились 16 кроликов породы шиншилла. Моделировали линейные дефекты слизистой оболочки ротовой полости длиной 1 см. Животных разделили на 2 группы — по 8 в каждой. В контрольной группе раны ушивали хирургическим швом нитью Prolene 5-0; в опытной — с помощью лазерной сварки и биоприпоя на основе бычьего сывороточного альбумина, индоцианина зеленого, одностенных углеродных нанотрубок и коллагена I типа с последующим наложением дополнительных швов нитью Prolene 5-0. Использовали проприорный лазерный прибор с длиной волны 970 нм с адаптивной термостабилизацией шва, который позволяет устанавливать температуру нагрева биоткани в области наложения лазерного шва с точностью ~1°С, что предотвращает термический некроз тканей.

Биологические ткани 24 образцов слизистой оболочки полости рта кроликов обеих групп были фиксированы на 1, 3, 5 и 10-е сутки и исследованы методами морфологии и морфометрии.

Результаты. Воспалительные изменения были в большей степени связаны с реакцией на шовный материал, пролиферативные (неоангиогенез и регенерация эпителия) — с активацией пролиферации фибробластов и эпителиоцитов вследствие воздействия лазера. Применение биоприпоя способствовало дополнительному сцеплению тканей, что в дальнейшем ускорило процесс регенерации и увеличило показатель неоангиогенеза и плотности сосудов на 1 мм².

В опытной группе воспалительная реакция завершалась уже к 5-м суткам, тогда как в контрольной группе остаточные признаки воспаления сохранялись в отдельных образцах до 10-х суток. На 10-е сутки в опытной группе отмечалось начало пролиферативной фазы. При иммуногистохимическом анализе выявлено статистически значимое увеличение количества кровеносных сосудов в опытной группе на 70,6% по сравнению с контролем (p=0,003).

Заключение. Применение лазерного воздействия в сочетании с биоприпоем способствует улучшению адгезии тканей, сокращению фазы воспаления и ускорению регенерации, обеспечивая минимальное рубцевание. Полученные данные подчеркивают перспективность применения предлагаемой нами методики соединения краев ран слизистой оболочки полости рта в клинической практике для пациентов с различными стоматологическими заболеваниями.

1. Faris A., Khalid L., Hashim M., Yaghi S., Magde T., Bouresly W., Hamdoon Z., Uthman A.T., Marei H., Al-Rawi N. Characteristics of suture materials used in oral surgery: systematic review. Int Dent J 2022; 72(3): 278–287, https://doi.org/10.1016/j.identj.2022.02.005.
2. La Rosa G.R.M., Scapellato S., Cicciù M., Pedullà E. Antimicrobial activity of antibacterial sutures in oral surgery: a scoping review. Int Dent J 2024; 74(4): 688–695, https://doi.org/10.1016/j.identj.2024.01.029.
3. Дурново Е.А., Тараканова В.А. Возможности оптимизации течения раневого процесса на слизистой оболочке в полости рта с использованием фотодинамической терапии. Dental Forum 2019; 4(75): 35–36.
4. Тарасенко С.В., Благушина Н.А. Гистологическая оценка использования биорезорбируемых коллагеновых мембран при закрытии раневых дефектов слизистой оболочки рта в эксперименте. Вятский медицинский вестник 2022; 1(73): 67–75.
5. Шарипов И.А., Дитковский В.В., Хатомкин Д.М., Ко­миссарова Н.В. Узлы и швы в хирургии. Синергия наук 2022; 71: 546–563.
6. Larjava H., Wiebe C., Gallant-Behm C., Hart D.A., Heino J., Häkkinen L. Exploring scarless healing of oral soft tissues. J Can Dent Assoc 2011; 77: b18.
7. Chandra G.B., VinayKumar M.B., Walavalkar N.N., Vandana K.L., Vardhan P.K. Evaluation of surgical scalpel versus semiconductor diode laser techniques in the management of gingival melanin hyperpigmentation: a split-mouth randomized clinical comparative study. J Indian Soc Periodontol 2020; 24(1): 47–53, https://doi.org/10.4103/jisp.jisp_186_19.
8. Блашкова С.Л., Крикун Е.В., Мустафин И.Г., Ва­леева И.Х., Блашкова Ю.В. Динамика клинических и иммунологических показателей при комплексном лечении эндопародонтальных поражений, включающем лазерную терапию. Казанский медицинский журнал 2021; 102(3): 322–328, https://doi.org/10.17816/KMJ2021-322.
9. Gerasimenko A.Y., Morozova E.A., Ryabkin D.I., Fayzullin A., Tarasenko S.V., Molodykh V.V., Pyankov E.S., Savelyev M.S., Sorokina E.A., Rogalsky A.Y., Shekhter A., Telyshev D.V. Reconstruction of soft biological tissues using laser soldering technology with temperature control and biopolymer nanocomposites. Bioengineering (Basel) 2022; 9(6): 238, https://doi.org/10.3390/bioengineering9060238.
10. Matteini P., Ratto F., Rossi F., de Angelis M., Cavigli L., Pini R. Hybrid nanocomposite films for laser-activated tissue bonding. J Biophotonics 2012; 5(11–12): 868–877, https://doi.org/10.1002/jbio.201200115.
11. Ark M., Cosman P.H., Boughton P., Dunstan C.R. Photochemical tissue bonding (PTB) methods for sutureless tissue adhesion. Int J Adhes Adhes 2016; 71: 87–98, https://doi.org/10.1016/j.ijadhadh.2016.08.006.
12. Judy M.M., Fuh L., Matthews J.L., Lewis D.E., Utecht R.E. Gel electrophoretic studies of photochemical cross-linking of type I collagen with brominated 1,8-naphthalimide dyes and visible light. Proc. SPIE 2128, Laser Surgery: Advanced Characterization, Therapeutics, and Systems IV 1994, https://doi.org/10.1117/12.184876.
13. Judy M.M., Nosir H.R., Jackson R.W., Matthews J.L., Utecht R.E., Lewis D.E., Yuan D. Photochemical bonding of skin with 1,8-naphthalimide dyes. Proc. SPIE 3195, Laser-Tissue Interaction, Tissue Optics, and Laser Welding III 1998, https://doi.org/10.1117/12.297902.
14. Merguerian P.A., Pugach J.L., Lilge L.D. Nonthermal ureteral tissue bonding: Nonthermal ureteral tissue bonding: comparison of photochemical collagen crosslinking with thermal laser bonding. Proc. SPIE 3590, Lasers in Surgery: Advanced Characterization, Therapeutics, and Systems IX 1999; https://doi.org/10.1117/12.350962.
15. Mulroy L., Kim J., Wu I., Scharper P., Melki S.A., Azar D.T., Redmond R.W., Kochevar I.E. Photochemical keratodesmos for repair of lamellar corneal incisions. Invest Ophthalmol Vis Sci 2000; 41(11): 3335–3340.
16. Беспалова Н.А., Дурново Е.А., Галкина Е.С., Тара­канова В.А., Рунова Н.Б. Возможности клинического использования метода инфракрасной термометрии в оценке течения раневого процесса после операции вестибулопластика с использованием свободных десневых трансплантатов. Пародонтология 2020; 25(2): 127–133, https://doi.org/10.33925/1683-3759-2020-25-2-127-133.
17. Ашурко И.П., Крылова Д.А., Белкин В.О., Яцен­ко А.Г., Тарасенко С.В. Результаты применения коллагенового матрикса при менеджменте мягких тканей в области дентальных имплантатов во фронтальном отделе верхней челюсти. Проблемы стоматоло­гии 2023; 19(4): 69–76, https://doi.org/10.18481/2077-7566-2023-19-4-69-76.
18. Antoshin A., Gostev M., Khristidis Y., Giliazova A., Voloshin S., Blagushina N., Smirnova O., Diachkova E., Istranova E., Usanova A., Solodov N., Fayzullin A., Ivanova E., Sadchikova E., Vergara Bashkatova M.N., Drakina O., Tarasenko S., Timashev P. Electrophoretically co-deposited collagen-lactoferrin membranes with enhanced pro-regenerative properties for oral soft tissue regeneration. Int J Mol Sci 2023; 24(24): 17330, https://doi.org/10.3390/ijms242417330.

Morozova E.A., Sorokina E.A., Gerasimenko A.Y., Ryabkin D.I., Suchkova V.V., Timakova A.A., Fayzullin A.L., Tarasenko S.V. Laser Soldering with a Biosolder for Oral Mucosa Wound Closure in an Experiment. Sovremennye tehnologii v medicine 2025; 17(4): 34, https://doi.org/10.17691/stm2025.17.4.03